Abies, Tanne

Ca. 50 NHem; etwa vor 60 Ma entstanden (Xiang et al. 2015). Nadelbäume mit Holz ohne Harzkanäle, runden Blattnarben, aufrech­ten und am Baum zerfallenden Zapfen; Deckschuppen häu­fig länger als die Samenschuppen; wichtige Arten der Kli­maxvegeta­tionen der nördlich gemäßigten Zone; der Name stammt vermutlich vom indogermani­schen abh - strot­zen, ab, verweisend auf den stattli­chen Wuchs der Tannen. Pinaceae (Abb. 12).

Abies alba, Weißtanne

(Abb. 26). M/SEu; vor etwa 30-3 Ma entstanden (Semerikova and Semerikov 2014, Xiang et al. 2015). Bevorzugt auf hu­mo­sen Böden über Kalk und Silikat in der montanen Stufe und in Mischgesellschaften (Charakterart des Bu­chen-Tannenwaldes, Abieti-Fagetum); liebt halbschattige und kühle Standorte, ist aber gegen Spätfröste und Frei­stel­lung sehr em­pfind­lich; wichti­ger Bauholz-Forst­baum.

Die Tanne bildet mit vielen Basidio­myceten­arten Ekto­mykorrhizen, (s. Anhang Abies ECM), darunter auch spezifische.

Die folgenden Tabellen 1 und 2 ermöglichen eine Übersicht der spezifischen Wirtsbindungen von ektomykorrhizierenden Arten (ECM) der Gattungen Cortinarius, Schleierling und Lactarius, Milchling.

Abb. 27: Cortinarius atrovirens, schwarzgrüner Klump­fuß bei Tanne. Oberjoch, 3.10.2004. Orig.

Wirte von Cortinarius, Schleierlinge

Tabelle 1: Auswahl von Cortinarius-Arten, Schleierlin­ge, mit Wirten:

Wirte von Lactarius, Milchlinge

Tabelle 2: Auswahl von Lactarius-Arten, Milchling, Reizker, mit Wirten:

Abb. 28: Spezifische Wirtsbindungen von Milchlingen, Lactarius, als Ektomykorrhizabildner in Abhängigkeit vom Bodenchemismus. Lactarius deterrimus, Fichtenreizker, ist der Mykobiont von Picea abies und L. salmonicolor, Tannenreizker, ist spezifisch für Abies alba. Lactarius delicisch, echter Reizker, L. sanguifluus, Blutreizker und L. semisanguifluus sind mit Pinus sylvestris, Waldkiefer, assoziiert, bevorzugen aber unterschiedliche ph-Grade der Böden von sauer (rot) bis basisch (blau). Juniperus, Wacholder, ist keine ECM-Gattung. Nach Oberwinkler (2012).

Abb. 29: Ektomykorrhizierende Ascomyceten: a-e Elaphomyces granulatus, Hirschtrüffel, a-d Stadien der Fruchtkörperenticklung, a jung, b mit Asci, c, d mit reifen Ascosporen; e Ascus mit unreifen Ascopsoren. f, g Choiromyces maeandriformis, Weißtrüffel, f Weitrüffelknolle von außen, g Längschnitt mit unregelmäßigen Hymeniumskammern. a-e Tübingen Spitzberg, 21.11.1966; f, g Tübingen Rosenau, 4.10.1984, Orig.

Pucciniales, Rostpilze von Abies alba, Tanne

(Abb. 18, 20, 30-32). Aus Tabelle 3 ist ersichtlich, dass Arten der Rostpilzgattungen Hyalopsora, Milesina, und Uredinopsis nur auf Tanne und Farnen vorkommen und Arten von Melampsora, Pucciniastrum und Melampsorella zweikeimblättrige Dikaryophytenwirte besitzen.

Abb. 30: Bei wirtswechselnden Farn-Rostpilzen sind die Haplontenwirte nur Tannen, in der heimischen Flora Abies alba, die Weißtanne. a Schnitt durch das Blatt des Rippenfarns, Blechnum spicant, mit dem Uredolager (II) von Milesina blechni auf der Blattunterseite. b Teleutosporenlager in den Wirtsepidermiszellen; Keimung mit reif quer septierten Basidien und Schleudersporenbildung; eine Basidiospore mit junger Sekundärspore. Oberjoch, 8.9.1986. Orig.

Rostpilze mit Haplophasen auf Abies alba, Tanne

und Dikaryophasen auf Farnen oder zweikeimblättrigen Bedecktsamern

Tabelle 3: Rostpilze auf Abies alba und ihren II und III-Wirten:

Abb. 31: Hexenbesen verursacht durch Melampsorella caryophyllacearum auf der Tanne. Hochstaufen bei Bad Reichenhall, 30.7.2002. Orig.

Abb. 32: Melampsorella caryophyllacearum auf der Unterseite von Tannennadeln mit Pykniden (0) und Aecidien (I). Oberjoch, 28.6.1985. Orig.

Weitere Nadelparasiten von Abies alba, Tanne

Abb. 33: Schnitt durch einen Fruchtkörper von Rhizoctonia sp. auf der Unterseite einer Nadel von Abies alba, Tanne, mit unterschiedlich entwickelten Basidien und Basidiosporen. Oben sind Epidermiszellen der Tannennadel abgebildet; leg. H. Butin. Orig.

Es ist nicht geklärt, ob sich eine parasitische Rhizoctonia an Tannennadeln (Abb. 33) von Rhizoctonia butinii auf Picea abies, Fichte, (Abb. 243) spezifisch unterscheidet.

Die Nadelbräune der Tanne wurde Nematostoma parasiticum (Herpotrichia parasitica, Dothideomycetes, Pleosporales, Abb. 24f) zugeschrieben. Dieser Pilz parasitiert jedoch Rhizoctonia butinii (Butin 2015). ​​ 

Auf Tannennadeln parasitieren mehrere Asco­myceten, darunter Botrytis cinerea, Grauschimmel, (Helotiales, Sclerotiniaceae Abb. 41), ​​ Lirula nervisequia, (Hypodermella n.), der Tannennadelritzenschorf (Rhytismatales, Rhytismataceae, Abb. 41), Rhizosphaera ou­demansii, die Nadelbräune (Dothideales) und der Schwächeparasit Cytospora friesii (Valsa, Diaporthales). Herpotrichia juniperi (H. nigra, Melanommataceae, Pleosporales, Abb. 352), der schwarze Schneeschimmel, tritt oft in Massenbeständen auf Nadelgehölzen in der subalpinen Stufe auf.

Holzpilze an Abies alba, Tanne

An den Zweigunterseiten der Tanne finden sich nicht selten die tannen­spezifischen Holzzersetzer Aleu­ro­discus amor­phus (orange Scheiben, Abb. 34a, e-h), Hyme­no­­chaete cruenta (blut­far­bi­ge Borstenscheibe, Abb. 37, vgl. Tabelle 3), graue, frisch weichgelati­nöse Belä­ge von Exidiopsis grisea, und der stiellose Blät­­ter­pilz Panel­lus fuscoviolaceus (Tannen­zwerg­knäue­ling). Selten ist dagegen der eben­falls spe­zifi­sche becherförmige Basidiomycet Cy­phella digi­talis (Tan­nen­glöck­chen, Abb. 35a-c).

Wirte von Aleurodiscus s.l.

Tabelle 4: Auswahl von Aleurodiscus s.l.-Arten mit ihren Wirten:

Aleurodiscus gehört zu den Russulales (Abb. 15, 16 Ru, 34), was an der Merkmalskombination, amyloide Sporenornamentik bzw. Sporenwand und Gloeocystidialsystem, mikromorphologisch zu erkennen ist (Abb. 34e; Eriks­son and Ryvarden 1973, Oberwinkler 1977, Núñez and Ryvarden 1997). Ungewöhnlich sind riesige Basidien, die bei A. amorphus bis 300 μm lang werden können. In molekular begründeten, phylogenetischen Hypothesen gruppiert Aleurodiscus mit Stereum (Wu et al. 2001, Larsson and Larsson 2003, Larsson et al. 2004, Miller et al. 2006, Larsson 2007).

In Tabelle 4 sind bevorzugte Wirtsbindungen von Aleurodiscus s.l. zusammengestellt. Dabei wurden die Namen von Splittergattungen verwendet, die größtenteils auf molekularen Stammbäumen gründen (vgl. obige Zitate und Dai and He 2017). Begründet durch eigene Felderfahrung wird der Name Aleurocystidiel­lum (Aleu­rodiscus) scutellatum für die auf Pinus mugo verbreitete Art verwendet und nicht A. subcruentatum.

Cyphelloide Basidiomyceten